Phagen-Display

Das Phagen-Display (engl. phage display) ist eine biotechnologische Methode bei der aus großen, rekombinanten Bibliotheken Peptide, Proteinteile (z. B. Antikörperfragmente) oder komplette Proteine funktionell auf der Oberfläche von Bakteriophagen präsentiert werden, um anschließend geeignete Bindepartner für einen bestimmten Liganden zu isolieren und zu identifizieren. Das Phagen-Display ist für die Aufklärung von Protein-Protein-Interaktionen, der Entwicklung neuer biologischer Arzneistoffe und der Suche nach spezifischen Antikörpern für therapeutische, diagnostische oder experimentelle Anwendungen von großer Bedeutung.

Die Methode wurde von George P. Smith 1985 eingeführt.^[1]

Technik

Allgemeines Schema des In-vitro-Biopannings als zentrales Element des Phagen-Displays

Phagen-Display von Antikörper-Bibliotheken

Zunächst werden Antikörper-produzierende B-Zellen (Plasmazellen) aus dem Blut, Knochenmark oder Lymphknoten eines Spenders isoliert. Daraus wird die mRNA gewonnen und in cDNA umgeschrieben. Mit Hilfe der Polymerase-Kettenreaktion (PCR) werden aus der cDNA die Gene der leichten (V_L) und schweren Kette (V_H) der Antikörper vervielfältigt. Jeder Gensatz (V_L und V_H) wird mit dem verkürzten Gen des Hüllproteins pIII (minor coat protein) des M13-Phagen in einem speziellen Phagemid-Vektor ligiert und Escherichia coli damit transformiert. Dadurch exprimieren die E. coli Bakterien pIII-Fusionsproteine^[2] mit scFv-Fragmenten oder Fab-Antikörperfragmenten. Die Fusionsproteine werden durch ein Signalpeptid (pelB, ompA) ins Periplasma transportiert, dort falten sie sich zu einem funktionalen scFv bzw. durch Disulfidbrücke verbundenem Fab-Fragment.

Über das Hüllprotein pIII, das normalerweise für die Infektion der Bakterien verantwortlich ist, wird nach Koinfektion mit einem M13-Helferphagen (für die Expression des nicht modifizierten pIII und die anderen Phagenproteine) das funktionale Antikörperfragment beim Reifungsprozess neugebildeter Phagen in deren Außenhülle eingebaut. Gleichzeitig wird der Phagemid mit der zugehörigen genetischen Information für das entsprechende Antikörperfragment ins Innere der neugebildeten Phagen eingebaut. Jeder dieser rekombinanten Phagen hat also theoretisch ein anderes Antikörperfragment auf seiner Oberfläche und gleichzeitig die zugehörigen Gene (V_L und V_H) in seinem Inneren, vergleichbar mit den Milliarden von B-Zellen im (menschlichen) Körper.

In einem sogenannten Biopanning können die "bindenden" Phagen über die auf der Oberfläche exprimierten Antikörperfragmente durch Wechselwirkung mit fixierten Liganden (Antigenen) aus dem milliardenfachen Hintergrund der irrelevanten Phagen (Genbibliothek) herausgefischt werden.

Aus den so isolierten, "monoklonalen" Antikörper-Phagen können die zugehörigen Antikörpergene einfach isoliert und sequenziert werden. Ebenso können damit die selektierten Antikörper-Fragmente als lösliche Proteine für spezielle Anwendungen in Massenkultur in E. coli oder anderen Zellsystemen produziert werden.

Phagen-Display von Peptid-Bibliotheken

In gleicher Weise wie mit Antikörpern ist es möglich, Peptidsequenzen (9 bis 12 Aminosäurereste) anhand ihrer Affinität zu bestimmten Zielmolekülen zu selektieren.

Diese Technik ist sinnvoll, um kleine Moleküle zu selektieren, die sich später als Medikamente einfacher als größere Moleküle wie z.B. Antikörper oder andere Proteine einsetzen lassen.

Eine andere Anwendungsmöglichkeit für Peptid-Bibliotheken ist auch die Bestimmung von Epitopsequenzen bei monoklonalen Antikörpern.

Phagen-Display von cDNA-Bibliotheken

Bisher wenig verwendet ist auch die Darstellung von cDNA-Expressionsbibliotheken auf Phagen. Da in den Sequenzen vieler Bibliotheken häufig Stopp-Codons vorkommen, ist es nicht möglich, die Sequenzen der Bibliothek vor dem pIII-Phagenprotein zu verbinden. Statt dessen wird das sogenannte Jun/Fos-System verwendet. Dafür wird zunächst Jun an das pIII-Protein gekoppelt. Auf dem gleichen Phagemid wird Fos vor die zu exprimierenden Sequenzen gesetzt. Da beide Proteine auf einem Phagemid enthalten sind, werden beide Proteine gleichzeitig exprimiert, Jun und Fos dimerisieren und koppeln auf diese Weise das pIII-Protein an die exprimierte cDNA-Sequenz.^[3]

Diese Methode stellt eine Alternative zu Expression von cDNA mit λ Phagen dar.

Anwendungen und Perspektiven

Das Phagen-Display ist eine Technik, die auf Protein-Protein-Interaktionen beruht und sich daher als Methode zum Nachweis von Wechselwirkungen zwischen Proteinen eignet.^[4] Display-Techniken ermöglichten erstmals die Herstellung und Charakterisierung vieler neuer humaner Antikörper. Auch andere Proteine, z. B. in Form von cDNA-Bibliotheken, lassen sich im Phagen-Display selektieren. Die Affinität der selektierten Antikörper kann durch Mutagenese erhöht werden. In den letzten Jahren hat es viele Verbesserungen der Techniken gegeben, aber Phagen-Display ist noch längst nicht Routine. Mehrere Firmen bieten inzwischen an, aus sehr großen, z. T. semisynthetischen Phagen-Display-Bibliotheken Antikörper gegen nahezu jedes beliebige Antigen zu produzieren. Rekombinante Antikörper machen ca. 30% aller derzeit in der klinischen Prüfung befindlichen Biopharmazeutika aus; das zeigt, welches Potential für das Wachstum der Biotechnologie in der Produktion dieser Produkte steckt.

Einzelnachweise

1. ↑ Smith Filamentous fusion phage: novel expression vectors that express cloned antigenes on the virion surface, Science, Band 228, 1985, S.1315-1317
2. ↑ Braun B, Paschke M: Phagen-Display auf neuen Wegen. In: Biospektrum. 12, Nr. 4, 2006, S. 381-383.
3. ↑ Crameri R, Jaussi R, Menz G, Blaser K: Display of expression products of cDNA libraries on phage surfaces. A versatile screening system for selective isolation of genes by specific gene-product/ligand interaction. In: Eur. J. Biochem.. 226, Nr. 1, November 1994, S. 53–58. PMID 7957259.
4. ↑ Sidhu SS, Fairbrother WJ, Deshayes K: Exploring protein-protein interactions with phage display. In: Chembiochem. 4, Nr. 1, Januar 2003, S. 14–25. doi:10.1002/cbic.200390008. PMID 12512072.

Literatur

• Schirrmann, T., Hust, M., Dübel, S. (2007): Die Antikörperfabrik: Antikörper für jedes Protein. Biologie in unserer Zeit 37, 348-351 PDF (548 kB)
• Hoogenboom, H.R.(2005): Selecting and screening recombinant antibody libraries. Nature Biotechnol 23, 1105-16 (Review)
• Schmiedl, A. & Dübel, S. (2004): Rekombinante Antikörper & Phagen-Display In: M. Wink. (Hrsg.): Molekulare Biotechnologie. Wiley-VCH. PDF (4,7 MB)
• Petrenko VA, Sorokulova IB. (2004): Detection of biological threats. A challenge for directed molecular evolution. Journal of Microbiological Methods 58:147-168.
• Hudson, P. J. and Souriau, C. (2003): Engineered antibodies. Nature Medicine 9: 129-134 (Review)
• Kontermann R, Dübel, S. (2001): Antibody Engineering - Springer Lab Manual Heidelberg: Springer
• Breitling, Dübel S. (1997): Rekombinante Antikörper. Heidelberg, Spektrum Akad. Verl.
• Fischer, P. (1996): Expression des humanen Antikörperrepertoirs mit Bakteriophagen: Techniken, Anwendungen und Perspektiven. Biospektrum, 2: 26-29 (Review)

Weblinks

• The Recombinant Antibody Pages Webseite über rekombinante Antikörper und Phagen-Display (englisch)
• Creating and selecting recombinant antibody libraries Übersichtsgrafik (englisch)
• pComb3-Vektoren für Phagen-Display Webseite über pComb3-Vektoren (englisch)
• Phagendisplay von Fab große Übersichtsgrafik