- Cystic Fibrosis Transmembrane Conductance Regulator
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Cystic Fibrosis Transmembrane Conductance Regulator —
Vorhandene Strukturdaten: 1xmi, 1xmj, 2bbo, 2bbs, 2bbt Masse/Länge Primärstruktur 1480 AS; 168 kDa Sekundär- bis Quartärstruktur multipass Membranprotein Isoformen 3 Bezeichner Gen-Namen CFTR; ABC35; ABCC7; CF; CFTR/MRP; MRP7; TNR-CFTR; dJ760C5.1 Externe IDs OMIM: 602421 UniProt: P13569 MGI: 88388 Transporter-Klassifikation TCDB 3.A.1.202.1 Bezeichnung ABC Superfamily Vorkommen Homologie-Familie ABC-Transporter Übergeordnetes Taxon Kiefermäuler Der Cystic Fibrosis Transmembrane Conductance Regulator (CFTR) ist ein auf der Oberfläche von Zellen festsitzendes Protein, ein sogenannter Chloridkanal, der hauptsächlich in der Zellmembran von Epithelzellen von Fischen und Landwirbeltieren vorkommt. Mutationen im CFTR-Gen beim Menschen führen zum Fehlen oder zur eingeschränkten Funktion des Kanals, was Ursache der Mukoviszidose (zystischen Fibrose) und der congenitalen Aplasie des vas deferens (CAVD) ist.
Inhaltsverzeichnis
Biosynthese
Das CFTR-Gen befindet sich auf Chromosom 7 in der q31.2-Region. Es ist 250kb lang und besteht aus 27 Exons. Die transkribierte mRNA hat eine Länge von 6.123 Basen und nach Translation und posttranslationaler Modifikation entsteht das CFTR-Protein mit 1.480 Aminosäuren.[1]
Proteinstruktur
Das Protein ist ein integrales Protein, das zu den cAMP-regulierten Ionenkanälen gehört. Es besitzt zwei Untereinheiten mit je sechs Transmembrandomänen, die den eigentlichen Transportkanal bilden. Zusätzlich besitzt das Protein zwei Nucleotid-Bindedomänen (NBD 1 und 2) und eine cytoplasmische (innerhalb der Zelle befindliche) regulatorische Domäne (R). Diese R-Domäne kann durch die Proteinkinase A phosphoryliert und somit aktiviert werden. CFTR enthält noch weitere Bindedomänen für Protein-Protein-Wechselwirkungen, dadurch reguliert es unter anderem den Transport von Bicarbonat und andere Kanäle. Es ist außerdem ein Mitglied der ATP-bindenden ABC-Transporter.[2]
Funktion und Pathologie
Das CFTR-Protein reguliert den Wasser- und Salztransport in der Plasmamembran und Epithelzellen.
CFTR-Mutationen schränken den Chloridionen-Transport aus der Zelle ein oder bringen ihn zum Erliegen. Folglich entsteht ein Konzentrationsunterschied, da viele Ionen in der Zelle, aber nur wenige im Sekret sind. Aufgrund der in der Zelle vorliegenden osmotischen Kräfte wird dem Sekret Wasser entzogen. Das Sekret wird zähflüssig, kann dadurch schlecht abgebaut werden und verstopft beispielsweise feine Kanäle in der Lunge oder den Vas deferens.
Mutationsklassen
Man unterscheidet sechs Mutationsklassen:
- 1. Klasse: keine Proteinsynthese, da Mutation richtiges Spleißen verhindert
- 2. Klasse: Protein kann nicht im endoplasmatischen Retikulum reifen
- 3. Klasse: Protein reift und erreicht Zielmembran, jedoch fehlende Funktion als Chloridkanal
- 4. Klasse: Protein ist in die Zielmembran eingebaut, hat aber abnormale leitende Eigenschaften
- 5. Klasse: Bildung einiger funktionsfähiger Proteine
- 6. Klasse: Verringerung der Halbwertszeit der Proteine
Klassen 1 bis 3 sind schwere Mutationen, während 4 bis 6 zu den leichten Mutationen zählen – hier ist die Funktion des Kanals nicht vollständig gehemmt.
Ob nun die Mutation zu CF oder CAVD führt, hängt von der Schwere der Mutationen auf beiden Allelen ab.
Bekannte Mutationen
ΔF508
Bei dieser Mutation fehlt wegen einer Deletion von drei Nukleotiden an der Stelle 508 die Aminosäure Phenylalanin. Das Protein kann nicht gefaltet werden, da es nicht ins endoplasmatische Retikulum gelangt, es gehört somit zu den Klasse-2-Mutationen.
R117H
Ist eine etwas mildere aber dennoch häufig auftretende Mutation, sie gehört zu den Klasse-4-Mutationen, die oft bei CBAVD-Patienten gefunden wird. Es ist eine Missense-Mutation, bei der an der 117. Stelle die Aminosäure Arginin durch Histidin ausgetauscht wurde. Diese Mutation führt zu einer geringeren Chloridionen-Leitfähigkeit.
Polymorphismen
Neben den Mutationen sind auch Polymorphismen häufig bei CAVD- und bei CF-Patienten zu finden. Die Polymorphismen gehören zu den Klasse-5-Mutationen. Man hat herausgefunden, dass es Unterschiede gibt in der Thymidinanzahl am Ende der 3'-Spleißstelle vor Exon 9. Man unterscheidet zwischen T5, T7 und T9. Je weniger Thymidin vorhanden ist, desto mehr sinkt die Spleißeffizienz für Exon 9. Dies hat zur Folge, dass die CFTR-Proteine nicht richtig gefaltet sind und somit abgebaut werden. Hier spricht man auch von partieller Penetranz, d. h. Durchschlagskraft. Die partielle Penetranz kann durch einen genetischen Faktor erklärt werden, den (TG)m-Polymorphismus. Denn die Effizienz des Spleißen an Exon 9 hängt u. a. von den TG-Wiederholungen ab. Je mehr TG-Wiederholungen im Intron 8 vorhanden sind, desto ineffizienter ist das Spleißen.
Literatur
- M. Claustres: Molecular pathology of the CFTR locus in male infertility. Reproductive BioMedicine Online, Vol 10. No 1, 2005, S. 14-41
- H.Cuppens & J-J. Cassiman: CFTR mutations and polymorphismus in male infertility. International journal of andrology, Nr. 27, 2004, review, S. 251-256
- G Phillipson: Cystic fibrosis and reproduction'.' Reprod. Fertil. Dev.,1998
- W.B. Guggino & B.A. Stanton: New insights into cystic fibrosis: molecular switches that regulate CFTR. Nature, 2006, review
Einzelnachweise
Weblinks
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