Immuntoxin

Immuntoxin
Schematische Darstellung der Endozytose eines Immuntoxins in einer Krebszelle.

Immuntoxine, auch als Immunotoxine bezeichnet, sind Immunkonjugate, die aus einer zellbindenden Komponente und einem Toxin bestehen. Immuntoxine sind potenzielle Arzneistoffe, die vor allem in der Onkologie zur Behandlung von Krebserkrankungen eingesetzt werden sollen (Krebsimmuntherapie).

Inhaltsverzeichnis

Aufbau und Synthese

Immuntoxine sind aus zwei Komponenten aufgebaut. Eine Komponente ist dabei ein möglichst selektiv an Krebszellen bindendes Trägermolekül. Dies ist in den meisten Fällen ein monoklonaler Antikörper oder ein Fragment eines monoklonalen Antikörpers oder ein entsprechendes Antikörper-Mimetikum. Das Trägermolekül dient zum einen als Ligand zur Anbindung an die Zielstruktur (Target) auf der Zellmembran einer Krebszelle. Der Ligand leitet sich definitionsgemäß aus dem Immunsystem ab.[1] Als Zielstrukturen dienen im Wesentlichen Tumorantigene oder tumorspezifische Rezeptoren, das heißt Proteine oder Glycoproteine, die idealisiert nur von Krebszellen an ihrer Zelloberfläche präsentiert (exprimiert) werden. Die andere Funktion des Trägermoleküls ist die Anbindung eines Toxins – der zweiten Komponente eines Immunotoxins. Toxine sind hochtoxische Verbindungen pflanzlichen oder bakteriellen Ursprungs. Für die Immuntoxine werden fast ausschließlich Toxine auf Proteinbasis verwendet. Bei den ersten Immuntoxinen wurden Antikörper und Toxin getrennt synthetisiert und dann über chemische Linker miteinander verbunden. Mittlerweile werden Immuntoxine vollständig rekombinant, das heißt mit Hilfe von gentechnisch veränderten Mikroorganismen, hergestellt (Fusionsproteine).[2] Auf diese Weise können auch Immuntoxine hergestellt werden, die nur aus der Bindungsdomäne des Antikörpers und einem aktiven Abschnitt des Toxins bestehen.[3][4]

Als Toxine kommen pflanzliche Toxine, wie beispielsweise Rizin[5], Saporin (ein Toxin das Ribosomen deaktiviert)[6][7], Bryodin 1[8][9] (ein ebenfalls Ribosomen deaktivierendes Toxin der Rotfrüchtigen Zaunrübe (Bryonia dioica)), Bouganin (ein Toxin von der Art Bougainvillea spectabilis aus der Gattung der Bougainvillea)[10], Gelonin (ein Toxin aus Gelonium multiflorum)[11] oder pokeweed antiviral protein (PAP, American Pokeweed = Amerikanische Kermesbeere = Phytolacca americana)[12], sowie bakterielle Toxine, wie zum Beispiel Diphtherietoxin[13][14][15], Listeriolysin O[16], Exotoxin A (Pseudomonas-Exotoxin)[17][18] oder Anthraxtoxin[19], zur Anwendung.[3]

Mittlerweile kommen überwiegend bakterielle Toxine, beziehungsweise deren Toxinabschnitte, zum Einsatz. Dies liegt unter anderem an der teilweise ungünstigen enzymatischen Verarbeitung und Freisetzung dieser Immuntoxine im Lysosom, sowie dem Übergang zu rekombinant hergestellten Immuntoxinen.[20] Wird der zellbindende Bereich des Toxins aus dem entsprechenden Gen, das für das Toxin kodiert deletiert, so kann die Anwendungssicherheit des Immuntoxins erhöht werden. So sind weitgehend nur die über das Trägermolekül aufgenommenen Toxine in der Zelle wirksam. Freie Toxine, die beispielsweise enzymatisch vom Trägermolekül abgespalten wurden, dagegen nicht.[4] Prinzipiell können auch mehrere Toxinmoleküle an einen Antikörper gebunden werden.[21]

Wirkungsprinzip

Über den Liganden (Antikörper, Antikörperfragment oder Antikörper-Mimetikum) bindet das Immuntoxin bevorzugt an die Zellen, die den entsprechenden Rezeptor, beispielsweise ein Tumorantigen, an ihrer Oberfläche exprimieren. Dabei bildet sich ein Immunkomplex aus Ligand und Rezeptor (Schlüssel-Schloss-Prinzip). Das Immuntoxin wird von der Zelle, an deren Oberfläche es gebunden ist, mittels rezeptorvermittelter Endozytose internalisiert und im Lysosom zerlegt. Dabei wird das Toxin freigesetzt und kann seine Wirkung entfalten. Die Wirkung ist toxinabhängig. Einige Toxine zerstören die Zellmembran, andere deaktivieren die Ribosomen oder ähnlich essentielle Proteine im Zytosol.[22] Durch die Schädigung der Zelle wird die Apoptose (programmierter Zelltod) ausgelöst. Bei katalytisch wirkenden Toxinen, wie beispielsweise dem Diphtherietoxin, genügt in vielen Fällen ein einziges Molekül[23] in einer Zelle, um sie abzutöten.[24]

Status der Entwicklung

Die ersten Konzepte für Immuntoxine stammen bereits aus den frühen 1980er Jahren.[25] Eine Reihe von Immuntoxinen befindet sich derzeit in der klinischen Erprobung.[16] Momentan ist kein auf einem Antikörper basierendes Immuntoxin als Arzneimittel zugelassen. Die wesentlichen Probleme liegen in der kurzen Plasmahalbwertszeit der aktuell getesteten Immuntoxine und der damit verbundenen schnellen Ausscheidung aus dem Körper[26] sowie weiteren im nächsten Absatz beschriebenen Ursachen.

Mit Denileukin Diftitox wurde 1999 in den Vereinigten Staaten das erste Immuntoxin von der FDA zur Therapie von therapierefraktären Patienten mit kutanem T-Zell-Lymphom zugelassen. Es besteht nicht aus einem Antikörper, sondern aus Interleukin-2, an das das Diphtherietoxin gebunden ist. Das Interleukin-2 bindet dabei an den Interleukin-2-Rezeptor, der im Wesentlichen von T-Lymphozyten exprimiert wird – so auch von den malignen T-Lymphozyten.[27][28] In Europa ist Denileukin Diftitox als Arzneimittel nicht zugelassen.[29]

Limitierungen und Potenziale

Die besten Ergebnisse in klinischen Studien wurden bisher bei hämatologischen Krebserkrankungen – im Wesentlichen bei T-Zell-Lymphome und Leukämien – erzielt.[30][31] Bei anderen Krebserkrankungen, insbesondere bei soliden Tumoren, sind die Ergebnisse bisher eher enttäuschend. Die Nebenwirkungen waren in vielen Fällen, bedingt durch eine zu hohe Anbindung auch an gesundes Gewebe, erheblich. Die Ursache lag hierbei in einer zu geringe Spezifität gegenüber Krebszellen.[22] Von den gesunden Körperzellen werden dadurch vor allem die Zellen der Leber und der Nieren geschädigt.[32] Ein vielversprechender Ansatz zur Lösung dieses Problems ist die Verwendung von bispezifischen Immuntoxinen. Dabei werden scFv-Fragmente mit zwei unterschiedlichen Liganden mit einem einzelnen Toxin verbunden, wodurch sich die Wahrscheinlichkeit der Bindung an eine Krebszelle erhöht.[23][22] Eine sehr häufige Nebenwirkung bei den Immuntoxinen der ersten Generation, auf der Basis von Rizin, ist das systemische Kapillarlecksyndrom (engl. vaskular leakage syndrome, VLS), das letztlich die Dosis des Immuntoxins limitiert.[33][3] Bei bakteriellen Toxinabschnitten ist dieses Problem nicht gegeben.[20] Mittlerweile stehen modifizierte Rizinsequenzen zu Verfügung, bei denen diese Nebenwirkung weitgehend ausgeschaltet ist.[34]

Eine weitere Schwierigkeit ist die schlechte Tumorpenetration der Immuntoxine. Die rekombinant hergestellten Immuntoxine zeigen dabei einige Vorteile gegenüber den chemisch gekoppelten Immuntoxinen.[35] Durch Verkleinerung des Liganden, beispielsweise durch Verwendung von Fab- oder scFv-Fragmenten, die ein höheres Penetrationsvermögen in das Gewebe besitzen[36], kann dieses Problem zum Teil überwunden werden.[37] Auch eine Verkleinerung des Toxins, durch Deletion von weniger aktiven Bereichen ist möglich.[23][20]

Bei vielen Patienten bildet sich eine Immunantwort gegen die Immuntoxine, da sie beispielsweise schon früher Antikörper gegen die in der Natur frei vorkommenden Toxine gebildet haben. Manche Toxine werden in den Krebszellen im Lysosom enzymatisch abgebaut und bleiben dann in der Zelle ohne Wirkung.[19]

Trotz dieser Einschränkungen und Probleme wird Immuntoxinen – auch bei soliden Tumoren – ein hohes therapeutisches Potenzial bescheinigt. Während beispielsweise bei der konventionellen Chemotherapie nekrotische ruhende Bereiche eines Tumors häufig nicht auf die Therapie ansprechen, beziehungsweise Resistenzen entwickelt haben, können Immuntoxine auch dort die Apoptose auslösen.[38] Auch in wirkstoffresistenten Zellen (Multiple Drug Resistance) können Immuntoxine die Apoptose auslösen.[39][40][41][42][32]

Weiterführende Literatur

Fachbücher

  • C. Huber (Herausgeber) u. a.: Krebsimmuntherapien. Deutscher Ärzteverlag, 2007, ISBN 3-769-11212-1.
  • W. A. Hall: Immunotoxin methods and protocols. Humana Press, 2000, ISBN 0-896-03775-4.
  • K. Kawakami u. a.: Cytotoxins and immunotoxins for cancer therapy. Routledge Chapman&Hall, 2004, ISBN 0-415-26365-4.
  • M. L. Grossbard: Monoclonal antibody-based therapy of cancer. Informa Healthcare, 1998, ISBN 0-824-70196-8.
  • M. Welschof und J. Krauss: Recombinant antibodies for cancer therapy. Verlag Springer, 2002, ISBN 0-896-03918-8.
  • G. T. Hermanson: Bioconjugate techniques. Academic Press, 2008, ISBN 0-123-70501-0.

Review-Artikel

Fachartikel

  • S. Barth u. a.: Immuntoxine - Wirkungsweise und Einsatz bei malignen Erkrankungen. In: Der Internist 38, 1997, S. 1063–1069. PMID 9453955 doi:10.1007/s001080050118
  • M. Mathew, R. S. Verma: Humanized immunotoxins: a new generation of immunotoxins for targeted cancer therapy In: Cancer Sci. 100, 2009, S. 1359–1365 PMID 19459847 (Review)
  • A. E. Frankel: New anti-T cell immunotoxins for the clinic. In: Leuk Res 29, 2005, S. 249–251. PMID 15661259

Dissertationen

Weblinks

Einzelnachweise

  1. R. J. Kreitmann: Recombinant immunotoxins containing truncated bacterial toxins for the treatment of hematologic malignancies. In: BioDrugs 23, 2009, S. 1–13. PMID 19344187 doi:10.2165/00063030-200923010-00001 (Review)
  2. S. R. Schmidt: Fusion-proteins as biopharmaceuticals -applications and challenges. In: Curr Opin Drug Discov Devel 12, 2009, S. 284–295. PMID 19333874 (Review)
  3. a b c M. Mathew, R. S. Verma: Humanized immunotoxins: a new generation of immunotoxins for targeted cancer therapy In: Cancer Sci. 100, 2009, S. 1359–1365 PMID 19459847 (Review).
  4. a b T. Lich u. a.: Behandlung von fortgeschrittenen Magenkarzinomen mit rekombinanten Immuntoxinen. In: Journal Onkologie 4, 2004
  5. A. E. Frankel u. a.: Therapy of patients with T-cell lymphomas and leukemias using an anti-CD7 monoclonal antibody-ricin A chain immunotoxin. In: Leuk Lymphoma 26, 1997, S. 287–298. PMID 9322891
  6. M. J. Glennie u. a.: Emergence of immunoglobulin variants following treatment of a B cell leukemia with an immunotoxin composed of antiidiotypic antibody and saporin. In: J Exp Med 166, 1987, S. 43–62. PMID 3110351
  7. D. J. Flavell: Saporin immunotoxins. In: Curr Top Microbiol Immunol 234, 1998, S. 57–61. PMID 9670612 (Review)
  8. F. Stirpe u. a.: Selective cytotoxic activity of immunotoxins composed of a monoclonal anti-Thy 1.1 antibody and the ribosome-inactivating proteins bryodin and momordin. In: Br J Cancer 58, 1988, S. 558–561. PMID 3265330
  9. J. A. Francisco u. a.: Construction, expression, and characterization of BD1-G28-5 sFv, a single-chain anti-CD40 immunotoxin containing the ribosome-inactivating protein bryodin 1. In: J Biol Chem 272, 1997, S. 24165–24169. PMID 9305866
  10. J. Cizeau u. a.: Engineering and biological characterization of VB6-845, an anti-EpCAM immunotoxin containing a T-cell epitope-depleted variant of the plant toxin bouganin. In: J Immunother 32, 2009, S. 574–584. PMID 19483652
  11. M. G. Rosenblum u. a.: Design, expression, purification, and characterization, in vitro and in vivo, of an antimelanoma single-chain Fv antibody fused to the toxin gelonin. In: Cancer Res 63, 2003, S. 3995–4002. PMID 12873997
  12. B. Jansen u. a.: Establishment of a human t(4;11) leukemia in severe combined immunodeficient mice and successful treatment using anti-CD19 (B43)-pokeweed antiviral protein immunotoxin. In: Cancer Res 52, 1992, S. 406–412. PMID 1370213
  13. A. E. Frankel u. a.: Anti-CD3 recombinant diphtheria immunotoxin therapy of cutaneous T cell lymphoma. In: Curr Drug Targets 10, 2009, S. 104–109. PMID 19199905 (Review)
  14. S. Potala u. a.: Targeted therapy of cancer using diphtheria toxin-derived immunotoxins. In: Drug Discov Today 13, 2008, S. 807–815. PMID 18678276 (Review)
  15. A. E. Frankel u. a.: Diphtheria toxin conjugate therapy of cancer. In: Cancer Chemother Biol Response Modif 20, 2002, S. 301–313. PMID 12703211 (Review)
  16. a b S. Bergelt u. a.: Listeriolysin O as cytotoxic component of an immunotoxin. In: Protein Sci 18, 2009, S. 1210–1220. PMID 19472336
  17. R. J. Kreitman: Chimeric fusion proteins - Pseudomonas exotoxin-based. In: Curr Opin Investig Drugs 2, 2001, S. 1282–1293. PMID 11717817 (Review)
  18. I. Pastan: Immunotoxins containing Pseudomonas exotoxin A: a short history. In: Cancer Immunol Immunother 52, 2003, S. 338–341. PMID 12700949 (Review)
  19. a b A. E. Frankel u. a.: Anthrax fusion protein therapy of cancer. In: Curr Protein Pept Sci 3, 2002, S. 399–407. PMID 12370003 (Review)
  20. a b c I. Pastan u. a.: Immunotoxin therapy of cancer. In: Nat Rev Cancer 6, 2006, S. 559–565. PMID 16794638 (Review)
  21. D. J. Flavell und S. U. Flavell: Comparison of immunotoxins bearing a single saporin molecule with multiple toxin conjugates. In: Methods Mol Biol 166, 2001, S. 87–100. PMID 11217378 (Review)
  22. a b c A. E. Frankel und J. H. Woo: Bispecific immunotoxins. In: Leuk Res 33, 2009, S. 1173–1174. PMID 19406472
  23. a b c D. A. Vallera u. a.: Genetic alteration of a bispecific ligand-directed toxin targeting human CD19 and CD22 receptors resulting in improved efficacy against systemic B cell malignancy. In: Leuk Res 33, 2009, S. 1233–1242. PMID 19327829
  24. D. Scharma u. a.: Antibody targeted drugs as cancer therapeutics. In: Nat Rev Drug Discov 5, 2006, S. 147–159. PMID 16424916 (Review)
  25. H. P. Zenner: Experimentelle Chemotherapie: Selektiv-toxische Antikörper-Toxin- Hybride gegen Larynxcarcinoinzellen. In: European Archives of Oto-Rhino-Laryngology S. 406–409. doi:10.1007/BF00459857
  26. X. Liu u. a.: Novel strategies to augment genetically delivered immunotoxin molecular therapy for cancer therapy. In: Cancer Gene Ther 2009 [Epub ahead of print] PMID 19461676
  27. F. Turturro: Denileukin diftitox: a biotherapeutic paradigm shift in the treatment of lymphoid-derived disorders. In: Expert Rev Anticancer Ther 7, 2007, S. 11–17. PMID 17187516 doi:10.1586/14737140.7.1.11
  28. C. Huber (Herausgeber) u. a.: Krebsimmuntherapien. Deutscher Ärzteverlag, 2007, ISBN 3-769-11212-1 S. 129
  29. Mycosis fungoides. eingesehen am 9. Juli 2009
  30. N. H. Dang u. a.: Phase II trial of denileukin diftitox for relapsed/refractory T-cell non-Hodgkin’s lymphoma. In: Br H Haematol 136, 2007, S. 439–447. PMID 17233846
  31. R. J. Kreitman u. a.: Phase I trial of recombinant immunotoxin RFB4(dsFv)-PE38 (BL22) in patients with B-cell malignancies. In: J Clin Oncol 23, 2005, S. 6719–6729. PMID 16061911
  32. a b I. Heisler: Bedeutung spaltbarer Peptidlinker für die Funktion rekombinanter Saporin-EGF-Immunotoxine. Dissertation, FU Berlin, 2003
  33. R. Baluna und E. S. Vitetta: Vascular leak syndrome: a side effect of immunotherapy. In: Immunopharmacology 37, 1997, S. 117-132. PMID 9403331 (Review)
  34. J. E. Smallshaw u. a.: Genetic engineering of an immunotoxin to eliminate pulmonary vascular leak in mice. In: Nature Biotechnol 21, 2003, S. 387–391. PMID 12627168
  35. P. S. Multani u. a.: Phase II clinical trial of bolus infusion anti-B4 blocked ricin immunoconjugate in patients with relapsed B-cell non-Hodgkin's lymphoma. In: Clin Cancer Res 4, 1998, S. 2599–2604. PMID 9829722
  36. P. J. Hudson und C. Souriau: Engineered antibodies. In: Nat Med 9, 2003, S. 129–134. PMID 12514726 (Review)
  37. A. E. Frankel u. a.: Targeted toxins. In: Clin Cancer Res 6, 2000, S. 326–334. PMID 10690507 (Review)
  38. A. Keppler-Hafkemeyer u. a.: Apoptosis induced by immunotoxins used in the treatment of hematologic malignancies. In: Int J Cancer 87, 2000, S. 86–94. PMID 10861457
  39. D. J. FitzGerald u. a.: A monoclonal antibody-Pseudomonas toxin conjugate that specifically kills multidrug-resistant cells. In: PNAS 84, 1987, S. 4288–4292. PMID 3495806
  40. G. H. Mickisch u. a.: Pseudomonas exotoxin conjugated to monoclonal antibody MRK16 specifically kills multidrug resistant cells in cultured renal carcinomas and in MDR-transgenic mice. In: J Urol 149, 1993, S. 174–178. PMID 8417204
  41. A. E. Frankel u. a.: Cell-specific modulation of drug resistance in acute myeloid leukemic blasts by diphtheria fusion toxin, DT388-GMCSF. In: Bioconjug Chem 9, 1998, S. 490–496. PMID 9667951
  42. J. P. Perentesis u. a.: Induction of apoptosis in multidrug-resistant and radiation-resistant acute myeloid leukemia cells by a recombinant fusion toxin directed against the human granulocyte macrophage colony-stimulating factor receptor. In: Clin Cancer Res 3, 1997, S. 347–355. PMID 9815691

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